Уропатогенные эшерихии – характеристика факторов вирулентности и антибиотикорезистентность

  • № 1 2018

Страницы: 

20

 – 

25

Язык: русский

Открыть файл статьи
Открыть страницу статьи в Интернет

Аннотация

Освещены особенности E. coli, которые обычно встречаются при инфекциях мочевых путей, их адгезии, фенотипические методы определения адгезивности эшерихий c эритроцитами человека, клеточными культурами НЕр-2, а также роль разновидностей пилей – Р-фимбрий и фимбрий типа 1, которые определяются в реакции гемагглютинации с маннозой. Описаны системы мультиплексной ПЦР, особенности катетер-ассоциированных уроинфекций и тенденции формирования резистентности к антибиотикам. Приведены новые данные о патогенезе рецидивирующих инфекций нижних мочевых путей в связи с обнаружением внутриклеточных бактериальных сообществ (биопленок) в пузырном эпителии.

Шарҳда сийдик йўли инфекция қўзғатувчиларида кенг учрайдиган E.coli хусусиятлари, уларнинг адгезивлиги, одам эритроцитига, НЕр-2 ҳужайра культурасига адгезивлигини аниқлашнинг фенотипик усуллари, шунингдек, манноза би- лан гемаглютинация реакцияси ёрдамида аниқланадиган турли хил хивчинлар Р- фимбрия ва фимбрия -тур 1 вазифа- лари ёритилди. ПЦР мультиплекс системаси ёрдамида уропатоген E.coli нинг ген- молекуляр текширув натижалари, катейтер боғланган уроинфекция ўзига хос хусусиятлари ва антибиотикларга турғунлик шаклланиш тенденциясила- ри келтирилди. Сийдик пуфаги эпителияси ҳужайра ичи бактериал боғланиши(биопленок) билан боғлиқ, сийдик йўли пастки рецидивирланган инфекциялари патогенези ҳақида янги маълумотлар келтирилди.

There are outlined the features of E. coli that are commonly found in urinary tract infections, their adhesion, the phenotypic methods of determining the adhesiveness of human cerebral blood cells to erythrocytes, the cellular cultures of HEp-2, as well as the role of varieties of pili-P-fimbriae and type 1 fimbria, which are determined in the reaction haemagglutination with mannose. The systems of multiplex PCR, the features of catheter-associated uroinfections and trends in the formation of resistance to antibiotics are described. New data on the pathogenesis of recurrent infections of the lower urinary tract in connection with the detection of intracellular bacterial communities (biofilms) in the vesicle epithelium are presented.

Список использованных источников

  1. Аль-Баяти Б.М. и др. Определение гена вирулентности fimH уропатогенных штаммов Escherichia coli, выделенных при инфекциях мочевыводящих путей // Изв. ДГПУ. – 2015. – №3. – С. 52-55.
  2. Аминева Э.М., Бахарева Л.И. Характеристика Escherichia coli, выделенной из мочи пациентов при различных клинических ситуациях // Вестн. Челябинского гос. ун-та. – 2013. – №7 (298). – Биология. – Вып. 2. – С. 51-52.
  3. Бондаренко B.M., Халиуллина СВ., Фиалкина С.В. и др. Маркеры уропатогенности Е. coli у детей с инфекцией мочеполовой системы // Детские инфекции. – 2004. – №3. – С. 21-23.
  4. Брилис В.И., Брилене Т.А., Ленцнер Х.П., Ленцнер А.А. Методика изучения адгезивного процесса микроорганизмов // Лаб. дело. – 1986. – №4. – С. 210-212.
  5. Бухарин О.В., Гриценко В.А., Вялкова А.А. Факторы уропатогенности бактерий: роль в патогенезе и значение в диагностике пиелонефрита г. Оренбург // Нефрол. и диализ. – 2001. – Т. 3, №4. – С. 469-475.
  6. Гизатулина С.С. и др. Способ оценки состояния микрофлоры кишечника человека по количеству адгезивно-активных бактерий и типу адгезинов // Журн. микробиол. – 1991. – №2. – С. 21-23.
  7. Жабченко И.А. Уропатогенные штаммы Esherichia coli: особенности функционирования, факторы вирулентности, значение в клинической практике // Таврический мед.-биол. вестн. – 2013. – Т. 16, №2 (ч. 2). – С. 62.
  8. Иванова Е.И. и др. Определение частоты встречаемости генов, кодирующих способность к формированию связывания пилей у аутоштаммов Escherichia coli (ЭПК) // Клин. лаб. диагностика. – №1. – 2015. – С. 52-55.
  9. Ивонин А.Г. Оценка адгезивных свойств штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ на модели эритроцитов: Автореф. дис. … канд. биол. наук. – Казань, 2010. – 18 с.
  10. Исхакова Х.И., Шадманова Н.А. Металлбеталактамазы (МБЛ), продуцируемые грамотрицательными бактериями // Инфекция, иммунитет и фармакол. – 2015. – №5. – С. 118-124.
  11. Кафтырева Л.А., Макарова М.А., Коновалова Т.А., Матвеева З.Н. Характеристика энтерогеморрагической Escherichia coli О145: Н28, выделенной от пациента с гемолитико-уремическим синдромом // Микробиол., эпидемиол., иммунол. – 2013. – №5. – С. 100-104.
  12. Киреева А.С., Заболотских Т.В., Серга А.П., Слепакова СА. Резистентность к антибактериальным препаратам возбудителей инфекций мочевыводящих путей у детей // Бюл. ГОУ ВП «Амурская гос. мед. академия Минздравсоцразвития РФ» (Благовещенск). – 2011. – Вып. 41. – С. 69-71.
  13. Конли Д. Резистентность к противомикробным препаратам: повторение "трагедии общего достояния" // Бюл. ВОЗ. – 2010. – Вып. 88. – №11.
  14. Лебедев С.Н., Огурцова А.В., Червинец А.В. и др. Способ определения адгезии микроорганизмов на эпителиальных клетках слизистой оболочки полости рта и клеточной линии Нер 2: Патент РФ. №2630060. – 2012.12.12.
  15. Перепанова Т.С., Волков Е.М. К вопросу патогенеза рецидивирующей инфекции нижних мочевыводящих путей // Экспер. и клин. урол. – 2015. – №1. – С. 100-104.
  16. Потатуркина-Нестерова Н.И., Немова И.С. Способ выявления генов, детерминирующих адгезины, гемолизины, манноза-резистентные гемагглютинины у генитальных штаммов Еscherichia coli: Патент РФ. №2441879. – 2012.10.02.
  17. Рафальский В.В., Ходневич Л.В. Острый цистит: подходы к выбору антимикробной терапии // Медицина неотложных состояний. – 2011. – №6. – С. 37.
  18. Серегина Н.В., Честнова Т.В., Жеребцова В.А., Хромушин В.А. Адгезия обзор биофизических особенностей микробной адгезии // Вестн. новых мед. технологий. – 2008. – Т. ХV, №3. – С. 173-177.
  19. Скепьян Е.Н., Василевский И.В., Топтун П.Д. Анализ спектра возбудителей инфекций мочевыводящих путей и характеристика их чувствительности к противомикробным лекарственным средствам у детей на амбулаторном этапе // Мед. панорама. – 2013. – №8. – С. 35-38.
  20. Честнова Т.В., Серегина Н.В. Особенности существования бактерий в составе биопленок на примере уропатогенных кишечных палочек. // Вестн. новых мед. технологий. – 2010. – Т. 17, №4. –С. 28-30.
  21. Andersen T.E., Khandige S., Madelung M. et al. Escherichia coli uropathogenesis in vitro: invasion, cellular escape, and secondary infection analyzed in a human bladder cell infection model // Infect. Immun. – 2016. – Vol. 80, №5. – P. 1858-1867.
  22. Alteri C.J., Mobley H.L. Quantitative profile of the uropathogenic Escherichia coli outer membrane proteome during growth in human urine // Infection and Immunity. – 2007. – Vol. 75. – P. 2679-2688.
  23. Bahalo S., Tajbakhsh E, Tajbakhsh S. Detection of some virulence factors of Escherichia coli isolated from urinary tract infection isolated of children in Shahrekord Iran by multiplex PCR middle-east // J. Sci. Res. – 2013. – Vol. 14, №1. – P. 29-32.
  24. Bielaszewska M., Mellmann A., Zhang W. et al. Characterisation of the Escherichia coli strain associated with an outbreak of haemolytic uraemic syndrome in Germany, 2011: a microbiological study // Lancet Infect. Dis. – 2011. – Vol. 11. – P. 671-676.
  25. Bien J., Sokolova O. Role of Uropathogenic Escherichia coli virulence factors in development of urinary tract infection and kidney damage // Int. J. Nephrol. – 2012. – Vol. 2012. – P. 15.
  26. Carlet J. et al. Antibiotic resistance: Protecting antibiotics- the declaration of the word alliance against antibiotic resistence // Indian J. Crit. Care Med. – 2014. – Vol. 18, №10. – P. 643-645.
  27. Carson L., Gorman S.P., Gilmore B.F. The use of lytic bacteriophages in the prevention and eradication of biofilms of Proteus mirabilis and Escherichia coli // FEMS Immunol. Med. Microbiol. – 2010. – Vol. 59. – P. 447-455.
  28. Croxen M.A., Finlay B.B. Molecular mechanisms of Escherichia coli pathogenicity // Nature Rev. Microbiol. – 2010. – Vol. 8. – P. 26-38.
  29. Deshpande P., Rodrigues C., Shetty A., Kapadia F. New Delhi metallo-beta lactamase (NDM-1) in Enterobacteriaceae: treatment options with carbapenems compromised // J. Assoc. Physic. India. – 2010. – Vol. 58. – P. 147-149.
  30. Duriez P., Olivier Clermont O., Bonacorsi S. et al. Commensal Escherichia coli isolates are phylogenetically distributed among geographically distinct human populations // Microbiology. – 2011. – Vol. 147, №6. – P. 1671-1676.
  31. Firoozeh F., Saffari M., Neamati F., Zibaei M. Detection of virulence genes in Escherichia coli isolated from patients with cystitis and pyelonephritis // Eskild Petersen, Aarhus, Denmark. – 2014. – Vol. 29. – P. 219-222.
  32. Foxman B. The epidemiology of urinary tract infection // Nature Rev. Urol. – 2010. – Vol. 7. – P. 653-660.
  33. Fu W., Forster T., Mayer O. et al. Bacteriophage cocktail for the prevention of biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa on catheters in an in vitro model system // Antimicrob. Agents Chemother. – 2010. – Vol. 54. – P. 397-404
  34. Нoban D.J., Nicolle L.E., Hawser S. et al. Antimicrobial susceptibility of global inpatient urinary tract isolates of Escherichia coli: results from the Study for monitoring antimicrobial resistance trends (SMART) program: 2009-2010. Guidelines on urological infections // Guid. Europ. Assoc. Urol. – 2011.
  35. Holling N., Lednor D., Tsang S. et al. Elucidating the genetic basis of crystalline biofilm formation in Proteus mirabilis // Infect. Immun. – 2014. – Vol. 82. – P. 1616-1626.
  36. Hunstad D., Justice S. Intracellular lifestyles and immune evasion strategies of uropathogenic Escherichia coli // Ann. Rev. Microbiol. – 2010. – Vol. 64. – P. 203-221.
  37. Jalalil H.R., Pourbakhsh A., Fallah F. Genotyping of Virulence Factors of Uropathogenic Escherichia coli by PCR // Novel. Biomed. – 2015. – Vol. 4. – P. 177-181.
  38. Johnson J., Stell A. Extended virulence genotypes of Escherichia coli strains from patients with urosepsis in relation to phylogeny and host compromise // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 261-272.
  39. Lehman S.M., Donlan R.M. Bacteriophage-mediated control of a two-species biofilm formed by microorganisms causing catheterassociated urinary tract infections in an in vitro urinary catheter model // Antimicrob. Agents Chemother. – 2015. – Vol. 59. – P. 1127-1137.
  40. Liu Shiwei, Ning Zhang, Zeliang Chen. Recurrent urinary tract infections caused by multidrug-resistant uropathogenic Escherichia coli implications for diagnosis and treatment // Europ. Urol. – 2013. – Vol. 63, №2. – P. 410-411.
  41. Linsenmeyer K., Strymish Ju., Weir S. et al. Activity of fosfomycin against extended-spectrum-β-lactamase-producing uropathogens in patients in the community and hospitalized patients // Antimicrob. Agents Chemother. – 2016. – Vol. 60, №2. – P. 1134-1136.
  42. Lutgring J.D., Brandi M. Limbagob the Problem of carbapenemase - producing-arbapenem - resistant-Enterobacteriaceae detection // J. Clin. Microbiol. – 2016. – Vol. 54, №3. – P. 529-534.
  43. Magilorakos A.P., Srinivasan A., Carey R.B. et al. Multidrug – resistant, extensively drug-resistant and pandgug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim acquired resistance // Clin. Microbiol. Infect. – 2012. – Vol. 18, №3. – P. 268-281.
  44. Matthew A. Croxen and Brett Finlay B. Molecular mechanisms of Escherichia coli pathogenicity // Nature Rev. Microbiol. – 2010. – Vol. 8. – P. 37.
  45. Nabet C., Raoult. D. The hidden epidemic of Escherichia coli // Clin. Microbiol. Infect. – 2014. – Vol. 20 (Is. 11). – P. O792-O793.
  46. Nzakizwanayo J., Hanin A., Alves D.R. et al. Bacteriophage can prevent encrustation and blockage of urinary catheters by Proteus mirabilis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2016. – Vol. 60, №3. – P. 1530-1536.
  47. Oliveira F.A., Paludo K.S. et al. Virulence characteristics and antimicrobial susceptibility of uropathogenic Escherichia coli strains // Gen. Mol. Res. – 2011. – Vol. 10, №4. – P. 4114-4125.
  48. Qin X., Hu F., Wu S.H. et al. Comparison of adhesin genes and antimicrobial susceptibilities between uropathogenic and intestinal commensal Escherichia coli // Strains. PLoS One. – 2013. – Vol. 8, №4. – P. 611-669.
  49. Raksha R. et al. Occurrence and characterization of uropathogenic Escherichia coli in urinary tract infections // Indian J. Med. Microbiol. – 2003. – Vol. 21, №2. – P. 102-107.
  50. Ranjan K., Ranjan N., Chakraborty A. et al. An approach to uropathogenic Escherichia coli in urinary tract infections // J. Lab. Physic. – 2010. – Vol. 2, №2. – P. 70-73.
  51. Sai Swaroop P. et al. Virulence-associated factors in Escherichia coli strains isolated from urinary tract infections // Int. J. Curr. Microbiol. – 2013. – Vol. 2, №10. – P. 436-440.
  52. Stickler D. Biofilm // Curr. Opin. Microbiol. – 1999. – Vol. 2, №3. – P. 270-275.
  53. Talan D.A., Takhar S.S., Krishnadasan A. et al. Fluoroquinoloneresistant and extended-spectrum β-lactamase-producing Escherichia coli infections in patients with pyelonephritis // Emerg. Infect. Dis. – 2016. – Vol. 22, №9. – P. 1594-1603ю
  54. Tarchouna M., Ferjani A., Selma W.B., Boukadida J. Distribution of uropathogenic virulence genes in Escherichia coli isolated from patients with urinary tract infection // Int. J. Infect. Dis. – 2013. – Vol. 17. – P. 450-453.
  55. Toval F., Kоhler C., Vogel U. Characterization of Escherichia coli isolates from hospital inpatients or outpatients with urinary tract infection // J. Clin. Microbiol. – 2014. – Vol. 52, №2. – P. 407-418.
  56. Travis K. Price, Tanaka Dune, Evann E. Hilt et al. The clinical urine culture: enhanced techniques improve detection of clinically relevant microorganisms // J. Clin. Microbiol. – 2016. – Vol. 54. – P. 1216-1223.
  57. Wafaa A. EL-Mosallamy, Somaya M. Desouky et al. Detection of some virulence factors and pyelonephritis-associated pilus (pap) encoding operon gene in uropathogenic Escherichia coli // Egypt. J. Med. Microbiol. – 2015. –Vol. 24, №3. – P. 37-43.
  58. Zdriarski J., Svanborg C., Wult B. et al. Molecular basis of commensialism in the urinary tract: low virulence or virulence attenuation? // Infect. Immun. – 2008. – Vol. 76, №2. – P. 695-703.
  59. Zhao L., Jing Zhang, Beiwen Zheng et al. Molecular epidemiology and genetic diversity of fluoroquinolone-resistant Escherichia coli isolates from patients with community. Onset infections in 30 Chinese county hospitals // J. Clin. Microbiol. – 2015. – Vol. 53, №3. – P. 767-770.

Список всех публикаций, цитирующих данную статью